夜香树的组织培养(夜香树常绿还是落叶)

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夜香树的组织培养

1丛生芽诱导

这一阶段主要是诱导芽,在外植体初代培养8-d.部分外植体芽开始膨大。d后相继出现新芽;培养d后新芽可长至2.0~3.8cm,生长情况见表l。

从表l可以看出。Ⅱ、Ⅳ这三个处理均有较高的出芽率.其中以处理Ⅱ即MS+6一BA0.5+NAA0.1芽萌发情况最好.芽粗壮.叶大且舒展.平均伸长3.5cm;处理I不添加生长调节物质,长势较整齐,但芽的萌发较慢,新芽叶片小且蜷缩.平均伸长1.5cm;处理Ⅲ芽萌发情况不好,玻璃化情况严重。处理Ⅳ芽萌发情况亦可,平均伸长2.7cm,但叶片小,不舒展,长势较弱。因此,Ⅳ虽有较高的出芽率,但新芽长势不好。不适宜作为继代材料使用。处理Ⅱ既有较高的出芽率且新芽长势又好,是较适宜的初代培养基。

2芽分化诱导培养

芽分化增殖过程是夜香树离体快速繁殖培养过程中一个非常重要的环节。获得无菌材料后,是否能顺利进入快速增殖培养阶段。筛选出符合要求分化增殖培养基是此阶段的主要任务.对于离体快速繁殖最终是否能应用于生产时间.受两个关键因素制约:(l)芽的增殖率、芽的增殖速度是离体快速繁殖中的重要环节,直接关系到能否商业化生产;(2)有效芽所占比例,指可作为继代材料或生根材料的芽占全部芽的百分率。此时芽的质量决定了芽的利用率的高低,所以选择一个增殖率高且有效芽多的增殖培养基是离体快速繁殖的关键。

将第一阶段培养成功的芽切下,接种于分化增殖培养基上,培养基以MS为基本培养基,6一BA、IBA分别设了5个梯度,共个处理,培养d。对生长情况(表2)分析可知,芽增殖用6-BAO.5mg/L、IBAO.2mg/L时,芽增殖倍数为7.5,芽苗生长正常,节间略长,但有利于继代繁殖。所以确定选取增殖倍数在5一6的分化增殖培养基,既符合增殖效果又符合得到健壮有效苗双重标准的处理为6-BA0.4~0.5mg/L,IBAO.2一0.3mg/L。

3生根培养

由表3分析可知,经过d的生根培养,不同浓度IBA对夜香树生根率、生根数均有不同程度的影响,其中以IBAO.3mg/L时生根情况最好,生根率高,发根早。有4一5条侧生根。当IBAO.5mg/L时发现,有些根生长在植株基部愈伤组织上,根粗壮,侧根多,但从苗瓶中取出移栽时根容易脱落,成活率不高。实验还表明,夜香树生根快慢与生根质量不仅受培养基的影响,而且与生根材料的健壮程度与木质化程度有密切关系。粗壮、半木质化材料生根快,主根与侧生根发育好(表3)。

4炼苗与移栽

夜香树试管苗在组培室内湿度比较恒定、无菌条件下产生出来的,因此,没有经过抗冷、抗热、抗早或抗病等因素的炼苗,当移栽、种植到小棚或温室栽培后往往会受到各种不利因素的影响,所以,在种植后7d应及时喷洒杀菌剂,每隔7一d喷1次。常用杀菌剂有多菌灵、瑞毒素、波尔多液,浓度掌握在l~倍为宜。

生根培养d后,当瓶内组培苗长到scm左右时,将生根的瓶苗移人自然光下光培养7d后揭膜。为减少取苗时对根系的伤害,在拔苗前适当往瓶中加人一些自来水浸泡l一2h,将苗拔出后用自来水冲去附着的根部的琼脂,移栽到用蒸汽消毒过的细煤渣或细沙中,成活率可达肠以上。在炼苗床上培养~d移人大田或容器中。

苗期管理

移植后每天淋水两次,淋水时注意不要用胶管或喷枪直射、直淋,最好用喷雾方式淋水。因为试管苗幼小,直射、直淋都会造成植株歪斜。生长初期7d喷施氮肥两次,d后加少许磷、钾肥,棍合施用。花后将枯枝和过密枝条剪除.对徒长进行截短处理。常见病害有轮纹病,可用%甲基托布津可湿性粉剂倍液喷洒。虫害有介壳虫和粉虱,用%杀螟松乳油倍液喷杀。

结论

Ms+6-BAo.5mg/L+NAA0.lmg/L+蔗糖3.0%+琼脂0.6%是夜香树较为理想的诱导芽萌发的培养基;芽增殖培养基为MS+6-BA0.5mg/L,IBA0.2mg/L+蔗糖3%+琼脂0.6%,继代培养d增殖系数可达7.5,且生长健壮。

在1/2MS+IBAO.3mg/L十蔗糖0.%十琼脂0.6%的培养基上,夜香树生根效果较好,生根率达到%,平均根数为5.7。在夜香树移栽炼苗的过程中要严格控制空气相对湿度,实验过程中发现夜香树瓶苗极易失水皱缩,炼苗前d空气相对湿度都应该保持在%以上,最好是通过扣玻璃瓶或塑料薄膜来保持湿度。

夜香树的花香过于浓郁,近距离闻其香气易使人引起头晕或不舒服的感觉。故只可在公园或庭院的空旷处种植,且数量不宜过多过密。

讨论

在试管苗生根培养中,耗费了大量的时间和培养空间,而采用试管苗瓶外生根不仅可以减少一次无菌操作的步骤,提高了培养空间,又简化了组织培养程序,降低了生产成本,提高了繁殖系数,能进一步解决工厂化育苗的难题。因此是一项值得研究的技术之一。


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